Caroline Jolly

CR1 CNRS

Laboratoire de Psychologie et Neurocognition
CNRS UMR 5105
Université Pierre Mendès-France
Bâtiment Sciences de l'Homme et Mathématiques
BP47, 38040 Grenoble Cedex 9 France

Tél. : 04 76 82 56 75
Fax : 04 76 82 78 34

caroline.jolly@upmf-grenoble.fr

Je suis biologiste de formation. Au cours de ma thèse, de mon post-doctorat, puis dans mon ancien laboratoire d’affectation (Equipe 10, CRI INSERM/UJF U823), j’ai travaillé sur l’étude des mécanismes de régulation de la réponse cellulaire au stress.

Lien vers le site de l’Equipe 10, CRI INSERM/UJF U823, à l’Institut Albert Bonniot : http://www-iab.ujf-grenoble.fr/equ_d.php?b=2&c=22&i=36

J’ai rejoint le Laboratoire de Psychologie et NeuroCognition en novembre 2008 Depuis cette date, je travaille sur deux nouveaux domaines de recherche développés au sein du laboratoire afin de me familiariser avec les théories et les méthodes des sciences cognitives.

• 1992-1993: DEA de Biologie Cellulaire et Moléculaire (Université J. Fourier, Grenoble). Mention Bien.
• 1993-1997: thèse de l'Université J. Fourier, spécialité Biologie. Soutenue le 23 octobre 1997. Mention Très Honorable avec Félicitations du Jury.
• 1998-1999: Stage post-doctoral, laboratoire du Pr Richard Morimoto, Northwestern University, IL (USA).
• depuis Janvier 2000: chargée de recherche CNRS (CR1 depuis 2002).
  

  - Janv 00 - Oct 08 : CRI INSERM U823, Equipe 10, Institut Albert Bonniot, Grenoble. Thème de recherche : « Mécanismes de régulation de la réponse cellulaire au stress ».

  - Depuis Nov 08 : LNPC, UMR CNRS 5105, Université Pierre Mendès-France, Grenoble. Thèmes de recherche : « Apprentissages et développement cognitif de l’enfant ».

• 1999: bourse post-doctorale de la « Daniel F. and Ada L. Rice Foundation » (Chicago, USA).

• 1998: bourse post-doctorale de l’Association pour la Recherche contre le Cancer (ARC).

• Oct 97 - Déc 97: bourse de jointure de la Société de Secours des Amis des Sciences (Paris).

• Oct 96 - Oct 97: bourse de thèse de la Ligue Nationale contre le Cancer.

• Oct 92 - Sept 96: allocation de recherche du Ministère de l'Enseignement Supérieur et de la Recherche.

• 1999: Gramm travel fellowship du “Lurie Cancer Comprehensive Center of Northwestern University” (Chicago, USA).

1/ Les conceptions naïves des enfants dans le domaine de la biologie

En collaboration avec Edouard Gentaz, Karine Mazens, Carole Berger et Gwenaël Kaminski

Cette recherche s’inscrit dans le cadre d’un projet financé par l’ANR Sciences Humaines et Sociales, porté par Edouard Gentaz, et intitulé « La reconnaissance de la parenté chez le nouveau-né et l’adulte : approche interdisciplinaire ».

Le projet auquel je participe concerne l’étude des conceptions naïves des enfants dans le domaine de la biologie, et plus particulièrement l’hérédité. Des études ont montré que les jeunes enfants ont des difficultés à savoir quels traits sont transmis génétiquement des parents à leurs descendants, des traits acquis par l’environnement. Cependant, l’âge à partir duquel les enfants commencent à faire cette distinction et donc à comprendre l’hérédité biologique n’est pas clair (Solomon et al 1996; Springer 1996; Johnson and Solomon 1997; Weissman and Kalish 1999; Solomon 2002; Berger et Mazens 2009). Au laboratoire, nous utilisons des approches originales, basées sur celles utilisées dans le domaine de la reconnaissance de parentèle, afin de tester l’évolution des connaissances des enfants concernant l’hérédité en fonction de leur âge (manuscrit en préparation).

2/ Préparation et aide à l’apprentissage de l’écriture chez les jeunes enfants

En collaboration avec Edouard Gentaz et Richard Palluel-Germain

Une grande partie des apprentissages scolaires fondamentaux mobilise seulement les modalités sensorielles visuelle et auditive des jeunes enfants (5 à 6 ans). Depuis plusieurs années, les recherches menées au LPNC ont permis de montrer que l’ajout de la modalité haptique manuelle dans des entraînements scolaires classiques peut améliorer leur efficacité dans trois domaines : la lecture à travers le décodage des mots, l’écriture à travers le tracé des lettres et la reconnaissance des figures géométriques (Bara et Gentaz, 2007, 2009 ; Gentaz, 2009).

Dans la continuité de ces recherches, nous avons cherché à élaborer des “outils pédagogiques efficaces” destinés à être utilisés dans les classes par les enseignants pour favoriser la préparation à l’apprentissage de l’écriture. L’écriture est une activité complexe qui fait appel à plusieurs compétences, cognitives, attentionnelles, linguistiques, et motrices (Bara et Gentaz, 2009). Il a été montré au laboratoire que l’utilisation d’un dispositif haptique (bras-robot à retour d’effort : PHANToM Omni®), qui permet de guider le stylo et ainsi de contrôler non seulement la forme mais également la dynamique du mouvement d’écriture, se révèle être bénéfique dans l’apprentissage du tracé des lettres chez les jeunes enfants (Palluel-Germain et al., 2007).

L’objectif de ce projet de recherche est d’évaluer les effets d’un entraînement visuo-haptique d’aide à l’apprentissage de l’écriture sur le tracé de lettres chez les enfants apprenti-scripteurs de grande section de maternelle (GS) et CP. Etant donné le coût trop élevé d’un dispositif de type « bras-robot » empêchant sa mise en œuvre à grande échelle dans les écoles,  nous avons décidé d’élaborer un nouveau type d’entraînement “visuo-haptique” sur support informatique (tablette tactile). Nous avons généré des exercices d’écriture virtuels destinés aux enfants de GS et de CP. Ces exercices seront répétés plusieurs fois par l’enfant sous forme d’entraînements, jusqu’à acquisition des compétences mises en jeu. Une évaluation des progrès des enfants sera effectuée régulièrement.

L’écriture des enfants est analysée grâce au logiciel SCRIBBLE, développé au laboratoire. Ce logiciel permet, à partir des tracés numérisés des recueillis sur une tablette graphique, de calculer différents paramètres quantitatifs comme par exemple le nombre de levers de crayon, la distance parcourue, la vitesse totale, ou la durée. L’ensemble de ces paramètres permet ainsi d’évaluer la qualité et la fluidité du tracé. Récemment, nous avons réalisé une étude comparative de l’écriture de différents enfants apprenti-scripteurs de GS et de CP à l’aide de ce logiciel (Jolly C., Huron C., Albaret J.-M., Gentaz E., soumis).

Depuis mon intégration au LPNC :

Jolly C, Huron C, Albaret J-M, and Gentaz E. Analyse comparative des traces de letters cursives d’une enfant atteinte d’un trouble d’acquisition de la coordination et scolarisée en CP avec ceux d’enfants ordinaires de GM et de CP. Psychologie Française (soumis).

Avant mon intégration au LPNC :

Eymery A, Souchier C, Vourc’h C, and Jolly C. Binding to and transcriptional activation of novel heterochromatic targets by the Heat Shock Factor 1. J. Cell Sci. (soumis).

Fritah S, Col E, Boyault C, Govin J, Sadoul K, Chiocca S, Christians E, Khochbin S, Jolly C, and Vourc’h C (2009). Heat shock factor 1 controls genome-wide acetylation in heat-shocked cells. Mol. Biol. Cell 20: 4976-4984.

Sandqvist A, Björk JK, Akerfelt M, Chitikova Z, Grichine A, Vourc’h C, Jolly C, Salminen TA, Nymalm Y and Sistonen L (2009). Heterotrimerization of HSF1 and HFS2 provides a transcriptional switch in response to distinct stimuli. Mol. Biol. Cell 20: 1340-1347.

Jolly C and Lakhotia SC (2006). Human sat III and Drosophila hsrw transcripts: a common paradigm for regulation of nuclear RNA processing in stressed cells. Nucleic Acids Res. 34: 5508-5514.

Metz A, Soret J, Vourc’h C, Tazi J, Jolly C (2004). A key role for stress-induced satellite III transcripts in the relocalization of splicing factors into nuclear stress granules. J Cell Sci 117: 4551-4558.

Jolly C, Metz A, Govin J, Vigneron M, Turner BM, Khochbin S, Vourc’h C (2004). Stress-induced transcription of satellite III repeats. J Cell Biol 164: 25-33.

 Jolly C, Konecny L, Kutskova YA, Cotto JJ, Morimoto RI, Vourc'h C (2002). In vivo binding of HSF1 to human chromosome 9 heterochromatin during stress. J.Cell Biol 156: 775-81.

 Mathew A, Mathur SK, Jolly C, Morimoto RI (2001). Stress-specific activation and repression of heat shock factors 1 and 2. Mol. Cell. Biol. 21: 7163-7171.

Jolly C, Morimoto RI (2000). Role of the heat shock response and molecular chaperones in oncogenesis and cell death. J. Natl. Cancer Inst. 92: 1564-1572.

Mathew A, Shi Y, Jolly C, and Morimoto RI (2000). Analysis of the mammalian heat shock response: Inducible gene expression and heat shock factor activity. In Methods in Molecular Biology, 99: Stress Response: Methods and Protocols, p217-255. Humana Press Inc., Totowa, NJ.

Jolly C, Denarier E, Mongelard F, Robert-Nicoud M, Vourc'h C, Bosc C, and Job D (1999). Assignment of the STOP gene (MAP6) to human chromosome bands 6p12-->p11 by fluorescence in situ hybridization. Cytogenet. Cell Genet. 86: 25.

Jolly C and Morimoto RI (1999). Stress and the cell nucleus: dynamics of gene expression and structural reorganization. Gene Expr. 7: 261-270.

Jolly C, Vourc'h C, Robert-Nicoud M, and Morimoto RI (1999). Intron-independent association of splicing factors with active genes. J Cell Biol 145: 1133-1143.

Jolly C, Usson Y, and Morimoto RI (1999). Rapid and reversible relocalization of HSF1 within seconds to nuclear stress granules. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 96: 6769-6774.

Jolly C, Robert-Nicoud M, and Vourc'h C (1998). Contribution of the growing RNA molecules to the nuclear transcripts foci observed by FISH. Exp. Cell Res. 238: 299-304.

Denarier E, Aguezzoul M, Jolly C, Vourc'h C, Roure A, Andrieux A, Bosc C, and Job D (1998). Genomic structure and chromosomal mapping of the mouse STOP gene (Mtap6). Biochem. Biophys. Res. Commun. 243: 791-796.

Jolly C, Michelland S, Rocchi M, Robert-Nicoud M, and Vourc'h C (1997). Analysis of the transcriptional activity of amplified genes in tumor cells by fluorescence in situ hybridization. Hum. Genet. 101: p81-87.

Jolly C, Morimoto R.I., Robert-Nicoud M, and Vourc'h C (1997). Nuclear foci enriched in HSF1 transcription factor: relationship with heat shock gene transcription sites. J. Cell Sci. 110: 2935-9241.

Jolly C, Mongelard C, Robert-Nicoud M, and Vourc'h C (1997). Optimization of nuclear transcripts detection by FISH and combination with fluorescence immunocytochemical detection of transcription factors. J. Histochem. Cytochem. 45: 1585-1592.

* Second World Conference of Stress. Budapest (Hungary), August 2007. Invited speaker. Title of the talk: “Stress-induced nuclear bodies and transcription of repeated sequences”.

* Gordon Conference on “Stress proteins in growth, development and disease”. Newport, RI (USA), 17-22 juillet 2005.

Invited speaker and Session Chairman. Title of the talk: “HSF1 and chromatin remodeling during heat shock”.

* First Transregio5 Symposium on ‘Chromatin: Assembly and Inheritance of Functional States’. München (germany), October 9-11, 2003.

Poster: “Stress-induced transcription satellite III repeats”.

* CSC Symposium on ‘The Dynamic Nucleus: Questions and Implications’. London (UK), June 27-29, 2002.

Poster: “A functional role for the HSF1 stress granules in the heat shock response?”

* Cold Spring Harbor Meeting on the Dynamic Organization of Nuclear Function. New York (USA), September 13-17, 2000.

Poster: “HSF1 granules and the cellular response to stress”.

* First conference on “Stress and human disease”, Lake Bluff (USA), 22-24 Octobre1999.

Poster: “Polyglutamine aggregates sequester cellular proteins and induce the heat shock response”.

* Gordon conference on “Biological Structure and Gene Expression”, Meriden (USA), 15-20 Août 1999.

Poster: “The cellular response to stress as a model to study the dynamic organization of the cell nucleus”.

* Cold Spring Harbor Meeting on “The Dynamic Organization of Nuclear Function”. New York (USA), 7-11 Octobre 1998.

Présentation orale: “HSF1 granules: a novel dynamic nuclear compartment induced by stress”.

* Cold Spring Harbor Meeting on “The Dynamic Organization of Nuclear Function”. New York (USA), 7-11 Octobre 1998.

Poster: “SC35 splicing factor is involved in a step distinct from intron excision occurring at the site of transcription”.

* Keystone Symposium on “The Nuclear Matrix”. Copper Mountain (USA), 4-9 April 1998.

Présentation orale et poster: “Contribution of the growing RNA molecules to the nuclear transcripts foci observed by FISH”.

* 3rd Midwest Stress Meeting. Evanston (USA), 24 janvier 1998.

Présentation orale: “HSF1 granules: a new stress-induced nuclear compartment distinct from hsp genes transcription sites”.

* Keystone Symposium on “The Functional Organization of the Nucleus”. Santa Fe (USA), 23-28 Fevrier 1997.

Poster: "Evidence for a subnuclear compartment enriched in HSF1 transcription factor that does not correspond to the site of hsp genes transcription".

* 28th Annual Meeting of the European Society of Human Genetics. Londres (Angleterre), 11-13 Avril 1996.

Poster: “Evidence by FISH for an intrachromosomal amplification of the hsp90 beta gene and for transcriptional activity within the site of amplification in the A431 tumor cell line”. Abstract n°3.053, Eur. J. Hum. Genet. 4 (suppl.1), p33, 1996.

* 3rd conference of the European Society for Analytical and Cellular Pathology (ESACP). Grenoble (France), 16-20 Mai 1994.

Présentation orale: “Visualization of two endogenous human gene specific transcripts mapping the 6p21 locus in a tumor cell line”. Abstract n°369, Anal. Cell. Pathol. 6, p299, 1994.

* Co-organisation de la 8^ème réunion du GDR 2588 "Microscopie fonctionnelle du vivant" à l’Institut Albert Bonniot, Grenoble, France.

* Nombre de thèses encadrées : 3 (soutenues).

* Nombre d’étudiants en Master 2 encadrés : 4.

* Nombre d’étudiants en Master 1 encadrés : 4.